Porovnání účinnosti aferézy periferních kmenových buněk na separátorech krevních buněk

Stáhnout PDF English version

Autoři: K. Filonenko ¹; V. Zarutska ²; A. Martynchyk ³; Y. Kushchevyi ²; Y. Stepanishyna ²; I. Kriachok ⁴
Působiště autorů: Department of Hematology and Transplantology, University Clinical Center, Gdansk, Poland ¹; Bone Marrow Transplantation Department, National Cancer Institute, Kyiv, Ukraine ²; Immunology and Molecular Oncology, Epworth Healthcare, East Melbourne, VIC, Australia ³; Department of Chemotherapy of Hemoblastoses, National Cancer Institute, Kyiv, Ukraine ⁴
Vyšlo v časopise: Klin Onkol 2022; 35(6): 448-453
Kategorie: Původní práce
doi: https://doi.org/10.48095/ccko2022448

Souhrn

Východiska: Aferéza kmenových buněk je v procesu autologní transplantace kmenových buněk klíčovým krokem. Dostupné separátory krevních buněk (blood cell separators – BCS) mají díky svým technickým vlastnostem a vlivem obsluhy různou účinnost. Materiál a metody: Retrospektivě byla shromažďována data z aferéz periferních kmenových buněk provedených pomocí dostupných BCS od výrobce Fresenius (ComTec a Amicus) v Ukrajinském národním onkologickém institutu (National Cancer Institute Ukraine) v letech 2017–2020. Byl vypočítán koeficient účinnosti odběru (collection efficiency coefficient – CEC) a pro každý separátor byl upraven vzorec pro predikci celkového objemu zpracované krve (total volume of processed blood – TVPB). Výsledky: Analýza dat 60 pacientů (celkem 92 provedených aferéz). Průměrné hodnoty CEC byly (53,8 ± 36,6) % pro přístroj Amicus a (44,2 ± 37,3) % pro přístroj ComTec; p = 0,22. Při použití přístroje Amicus byl získán nižší objem produktu v porovnání s přístrojem ComTec; p = 2×10^–7. Množství odebraných kmenových buněk bylo v obou skupinách srovnatelné: (5,8 ± 5,7) ×10⁶/kg pro Amicus a (4,1 ± 3,1) ×10⁶/kg pro ComTech; p = 0,064. Aby bylo dosaženo optimálního množství kmenových buněk, byla provedena úprava vzorce pro odhad TVPB. Závěr: Hodnoty CEC pro oba přístroje byly v obecně akceptovaném rozmezí 30–50 % a výrazně se nelišily. Nicméně při použití přístroje Amicus bylo dosaženo nižších objemů produktu, přičemž ostatní charakteristiky byly srovnatelné.

Klíčová slova:

kmenové buňky – účinnost – autologní transplantace – separace krevních složek – separace buněk – leukoferéza – Amicus – ComTec

Zdroje

1. Duarte RF, Labopin M, Bader P et al. Indications for haematopoietic stem cell transplantation for haematological diseases, solid tumours and immune disorders: current practice in Europe, 2019. Bone Marrow Transplant 2019; 54 (10): 1525–1552. doi: 10.1038/s41409-019-0516-2.

2. Child JA, Morgan GJ, Davies FE et al. High-dose chemotherapy with hematopoietic stem-cell rescue for multiple myeloma. N Engl J Med 2003; 348 (19): 1875–1883. doi: 10.1056/NEJMoa022340.

3. Attal M, Harousseau JL, Stoppa AM et al. A prospective, randomized trial of autologous bone marrow transplantation and chemotherapy in multiple myeloma. Intergroupe Français du Myélome. N Engl J Med 1996; 335 (2): 91–97. doi: 10.1056/NEJM199607113350 204.

4. Mounier N, Canals C, Gisselbrecht C et al. High-dose therapy and autologous stem cell transplantation in first relapse for diffuse large B cell lymphoma in the rituximab era: an analysis based on data from the European Blood and Marrow Transplantation Registry. Biol Blood Marrow Transplant 2012; 18 (5): 788–793. doi: 10.1016/j.bbmt.2011.10.010.

5. Linch DC, Winfield D, Goldstone AH et al. Dose intensification with autologous bone-marrow transplantation in relapsed and resistant Hodgkin‘s disease: results of a BNLI randomised trial. Lancet 1993; 341 (8852): 1051–1054. doi: 10.1016/0140-6736 (93) 92411- l.

6. Philip T, Guglielmi C, Hagenbeek A et al. Autologous bone marrow transplantation as compared with salvage chemotherapy in relapses of chemotherapy-sensitive non-Hodgkin‘s lymphoma. N Engl J Med 1995; 333 (23): 1540–1545. doi: 10.1056/NEJM199512073332305.

7. Mohty M, Hübel K, Kröger N et al. Autologous haematopoietic stem cell mobilisation in multiple myeloma and lymphoma patients: a position statement from the European Group for Blood and Marrow Transplantation. Bone Marrow Transplant 2014; 49 (7): 865–872. doi: 10.1038/bmt.2014.39.

8. Carreras E, Dufour C, Mohty M et al. The EBMT handbook: hematopoietic stem cell transplantation and cellular therapies. Springer 2019: 117–121. doi: 10.1007/978-3-030-02278-5.

9. Giralt S, Costa L, Schriber J et al. Optimizing autologous stem cell mobilization strategies to improve patient outcomes: consensus guidelines and recommendations. Biol Blood Marrow Transplant 2014; 20 (3): 295–308. doi: 10.1016/j.bbmt.2013.10.013.

10. Mohty M, Hübel K, Kröger N et al. Autologous haematopoietic stem cell mobilisation in multiple myeloma and lymphoma patients: a position statement from the European Group for Blood and Marrow Transplantation. Bone Marrow Transplant 2014; 49 (7): 865–872. doi: 10.1038/bmt.2014.39.

11. Gertz MA. Current status of stem cell mobilization. Br J Haematol 2010; 150 (6): 647–662. doi: 10.1111/j.1365-2141.2010.08313.x.

12. Abrahamsen JF, Stamnesfet S, Liseth K et al. Large-volume leukapheresis yields more viable CD34+ cells and colony-forming units than normal-volume leukapheresis, especially in patients who mobilize low numbers of CD34+ cells. Transfusion 2005; 45 (2): 248–253. doi: 10.1111/j.1537-2995.2004.04210.x.

13. Bojanic I, Mazic S, Rajic L et al. Large volume leukapheresis is efficient and safe even in small children up to 15 kg body weight. Blood Transfus 2017; 15 (1): 85–92. doi: 10.2450/2016.0151-15.

14. Duong HK, Savani BN, Copelan E et al. Peripheral blood progenitor cell mobilization for autologous and allogeneic hematopoietic cell transplantation: guidelines from the American Society for Blood and Marrow Transplantation. Biol Blood Marrow Transplant 2014; 20 (9): 1262–1273. doi: 10.1016/j.bbmt.2014.05. 003.

15. Almeida-Neto C, Rocha V, Moreira FR et al. Validation of a formula predictive of peripheral blood stem cell yield and successful collection in healthy allogeneic donors. Hematol Transfus Cell Ther 2020; 42 (2): 164–165.e5. doi: 10.1016/j.htct.2019.04.004.

16. Rosenbaum ER, O‘Connell B, Cottler-Fox M. Validation of a formula for predicting daily CD34 (+) cell collection by leukapheresis. Cytotherapy 2012; 14 (4): 461–466. doi: 10.3109/14653249.2011.652733.

17. Shu Z, Heimfeld S, Gao D. Hematopoietic SCT with cryopreserved grafts: adverse reactions after transplantation and cryoprotectant removal before infusion. Bone Marrow Transplant 2014; 49 (4): 469–476. doi: 10.1038/bmt.2013.152.

18. Júnior AM, Arrais CA, Saboya R et al. Neurotoxicity associated with dimethylsulfoxide-preserved hematopoietic progenitor cell infusion. Bone Marrow Transplant 2008; 41 (1): 95–96. doi: 10.1038/sj.bmt.1705883.

19. Donmez A, Tombuloglu M, Gungor A et al. Clinical side effects during peripheral blood progenitor cell infusion. Transfus Apher Sci 2007; 36 (1): 95–101. doi: 10.1016/j.transci.2006.05.019.