#PAGE_PARAMS# #ADS_HEAD_SCRIPTS# #MICRODATA#

Vliv přípravku «Saprogel» na process hojetí ran u potkanů s modelem rány v plné tloušťce


Autoři: Oksana Strus 1;  Natalia Polovko 2
Působiště autorů: Department of Drug Technology and Biopharmaceutics, Danylo Halytsky Lviv National Medical University 1;  Department of Drug Technology, National University of Pharmacy, Kharkiv, Ukraine 2
Vyšlo v časopise: Čes. slov. Farm., 2020; 69, 75-82
Kategorie: Původní článek

Souhrn

Článek představuje výsledky studie účinnosti a mechanismu účinku Saprogelu na proces hojení ran a pro/antioxidační rovnováhu v séru potkanů ​​s modelem rány v plné tloušťce. Účinek hojení ran testovaných vzorků gelu byl hodnocen na základě dynamiky změny plochy (S) a procentního snížení plochy ran (PRA) ve 3., 7. a 14. dni léčby. Obsah produktů lipidové peroxidace (LPO) a aktivita antioxidačních ochranných enzymů v séru potkanů ​​byla stanovena dynamicky v různých fázích procesu hojení ran u potkanů. Léčba ran rány s plnou tloušťkou u potkanů snížila dobu jejich hojení o 24,5 % (p < 0,05), ale nebyl zaznamenán statisticky významný rozdíl mezi účinkem přípravku «Saprogel» a srovnávacího produktu na dobu hojení ran. Obsah produktů LPO v séru pokanů byl při použití Saprogelu snížen a enzymatická aktivita antioxidační ochrany SOD a CAT byla normalizována, což naznačuje, že jedním z mechanismů hojení ran jsou jeho antioxidační vlastnosti.

Klíčová slova:

extrakt Sapropelu – dermatotropní gelový produkt – proces hojení ran – pro-/antioxidační rovnováha


Zdroje

1. Mohanty C., Sahoo S.K. Curcumin and its topical formulations for wound healing applications. Drug Discov. Today 2017; 22, 1582–1592. doi:10.1016/j.drudis.2017.07.001

    2. Strus O., Polovko N., Yezerska O. Justification of technological parameters of the cream production with sapropel extract. Pharmacia 2019; 66(1), 19–25 doi:10.3897/pharmacia.66.e35022

    3. Velnar T., Bailey T., Smrkolj V. The wound healing process: An overview of the cellular and molecular mechanisms. J. Int. Med. Res. 2009; 37, 1528–1542. doi:10.1177/147323000903700531

    4. Ebadi M. Desk reference of clinical pharmacology. Taylor & Francis Group, LLC 2008.

    5. Hilman А. Г., Khardman D., Limberd L. Clinical farmacology by Hudman and Hilman. Moscow: Practika 2006.

    6. Blautin L. A. Local drug treatment of wounds. Problems and new possibilities of their solution. Consilium medicum: surgery (application) 2007; 1, 9–16.

    7. Girgolava S. S. A gunshot wound. Moscow: Medicine 2006.

    8. Rudenko V. V., Shmatenko O. P., Prytula R. L. Pharmacoeconomic analysis of local use medicinal products in II-nd phase of the wound process. Topical Issues in Pharmaceutical and Medical Science and Practice. 2013; 2 (12), 121–124.

    9. State Register of Medicinal Products of Ukraine, January, 2020 http://www.drlz.com.ua/

  10. Strus O., Polovko N. The composition and technology development of the gel dermatotropic product with sapropel extract. World J. Pharm. Pharma. Sci. 2020.

  11. Bilous S. B., Kalynyuk T. H., Gudz N. I. Aktualni pytannia farmatsevtychnoi rozrobky miakykh likarskykh zasobiv dlia zovnischnoho zastosuvannia. Farmatsevtychnyi zhurnal 2010; 2, 17–27.

  12. Encyclopedia of pharmaceutical technology. Ed. By J. Swarbrick. 3rd ed. N.Y: In-forma Halthcare USA, Inc. 2007; 4372 p.

  13. Pharmaceutical Manufacturing Handbook. Production and Processes 2008 https://www.uv.mx/personal/izcamacho/files/2012/02/Pharmaceutical-Manufacturing-Handbook-Production-and-Processes-Wiley-2008.pdf

  14. Kala K. J., Prashob P. K. J., Chandramohanakumar N. Humic substances as a potent biomaterials for therapeutic and drug delivery system-a review. Int. J. App. Pharm. 2019; 11(3), 1–4. doi:http://dx.doi.org/10.22159/ijap.2019v11i3.31421

  15. Schepetkin I., Khlebnikov A., Kwon B. S. Medical drugs from humus matter: Focus on mumie. Drug Dev. Res. 2002; 57(3), 140–159. doi:10.1002/ddr.10058

  16. Chauke T. L. Evaluating the efficacy, safety and possible mechanism of action of potassium humate with selenium. Dissertation (MSc) University of Pretoria 2014. http://hdl.handle.net/2263/40844

  17. Gomes de Melo B. A., Lopes Motta F., Andrade Santana M. H. Humic acids: Structural properties and multiple functionalities for novel technological developments Materials Science and Engineering C 2016; 62, 967–974. http://dx.doi.org/10.1016/j.msec.2015.12.001 0928-4931/

  18. Aykac A., Becer E., Okcanoglu T. B., Guvenir M., Suer K., Vatansever S. The cytotoxic effects of humic acid on human breast cancer cells. Proceedings 2018; 2, 1565.

  19. Jurcsik I. Possibilities of applying humic acids in medicine (wound healing and cancer therapy), In: Senesi N., Milano T. M. (eds.) Humic Substances in the Global Environment. Amsterdam, London, New York, Tokyo: Elsevier 1994; 1331–1336.

20. Ji Y., Zhang A., Chen X., Che X., Zhou K., Wang Z. Sodium humate accelerates cutaneous wound healing by activating TGF-β/Smads signaling pathway in rats. Acta Pharm. Sin. B (APSB) 2016; 6(2), 132–140. doi:10.1016/j.apsb.2016.01.009

  21. Metin Çalışır, Aysun Akpınar, Ahmet Cemil Talmaç, Aysan Lektemur Alpan, Ömer Fahrettin Göze Humic acid enhances wound healing in the rat palate evid based complement. Alternat. Med. 2018: 1783513. doi:10.1155/2018/1783513

  22. Kodama H., Denso Okazaki F., Ishida S. Protective effect of humus extract against Trypanosoma brucei infection in mice. J. Vet. Med. Sci. 2008; 70(11), 1185–1190. doi:10.1292/jvms.70.1185

  23. van Rensburg C. E. J., van Straten A., Dekker J. An in vitro investigation of the antimicrobial activity of oxifulvic acid J. Antimicrob. Chemother. 2000; 46(5): 853–854. doi:10.1093/jac/46.5.853

  24. Avvakumova N. P., Gerchikov A. Y., Khairullina V. R., Zhdanova A. V. Antioxidant properties of humic substances isolated from peloids. Pharm. Chem. J. 2011; 45, 192.

   25.   Kitapova R. R., Ziganshin A. U. Biologic activity of humic substances from peat and sapropel. Каzаnsky meditcinsky zhurnal 2015; 96(1), 184. https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/1495/1112

  26. van Rensburg C. E. J. The Antiinflammatory Properties of Humic Substances: A Mini Review. Phytother. Res. 2015; 29(6), 791–795. doi:10.1002/ptr.5319

  27. Naudé P. J. W., Cromarty A. D., van Rensburg C. E. J. Potassium humate inhibits carrageenan-induced paw oedema and a graft-versus-host reaction in rats. Inflammopharmacology 2010; 18(1), 33–39. doi:10.1007/s10787-009-0026-8

  28. Jooné G. K., van Rensburg C. E. J. An in vitro investigation of the anti-inflammatory properties of potassium humate. Inflammation 2004; 28(3), 169–174. doi:10.1023/B:IFLA.0000039563.90066.5d.

  29. Junek R., Morrow R., Schoenherr J. I., Schubert R., Kallmeyer R., Phull S., et al. Bimodal effect of humic acids on the LPS-induced TNF-α release from differentiated U937 cells. Phytomedicine 2009; 16, 470–476.

  30. Pastar I., Nusbaum A. G., Gil J. Interactions of Methicillin Resistant Staphylococcus aureus USA 300 and Pseudomonas aeruginosa in Polymicrobial Wound Infection. PLoS One 2013; 8(2), 1–11.

  31. Klöcking R, Sprössig M, Wutzler P, Thiel K-D, Helbig B. Antiviral wirksame Huminsäuren und huminsäureähnliche Polymere. Zeitschrift für Physiotherapie 1983; 35, 95–101. doi:10.1055/s-2008-1065760

  32. Schynkarenko A. L., Milenina N. G. Organic substances of therapeutic mud and their role in the mechanism of therapeutic effect on the body Sb. nauch. trudov Piatihorskoho NII kurortolohii I fizioterapii «Griazevie preparaty». Тоmsк 1981; 30–33.

  33. Strus O. Y. Study of sapropel extracts from Prybych natural deposits. J. Chem. Pharm. Res. 2015; 7(6), 133–137. http://www.jocpr.com/articles/study-of-sapropel-extracts-from-prybych-natural-deposits.pdf

  34. Strus O., Polovko N., Plaskonis Y. The investigation of the development of a cream composition with the sapropel extract. Asian J. Pharm. Clin. Res. 2018; 11(7), 147–150. doi:10.22159/ajpcr.2018.v11i7.23575

  35. Council Directive 2010/63/EU of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. Official Journal of the European Communities 2010; L 276, 33–79.

  36. European convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes. Council of Europe, Strasbourg 1986; 53 p.

37. Health guide for the care and use of Laboratory animals (NIH Publications No. 8023, revised 1978). Eighth Edition, 220 s.

  38. Law of Ukraine »On Protection of Animals from Cruel Treatment« of February 21, 2006, No. 3447-IV/ Data of the Verkhovna Rada of Ukraine. Official edition, 2006. No. 27. https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/3447-15/

  39. First national congress on Bioethics. Weekly Journal Pharmacy 2001; 308(37) (date 24. 09. 2001).

  40. Henry S. L., Concannon M. J., Yee G. J. The effect of magnetic fields on wound healing. Experimental study and review of the literature. Eplasty 2008; 8, 393–399.

  41. Gavrylov V. B., Gavrylova A. R., Khmara N. F. Determination of diene conjugates in blood plasma by UV absorption of heptane and isopropanol extracts. Laboratory Work 1988; 2, 60–63.

  42. Zymon A. D., Leschenko N. F. Colloidal chemistry. Moscow: Khimiia 1995; 336.

  43. Stalnaia I. D., Garischvili T. G. Moderm methods in biochemistry. Moscow: Medidcine 1977; 66–68.

  44. Chevari S., Chaba I., Sekey Y. The role of superoxide dismutase in the oxidative processes of a cell and a method for determining it in biological materials. Laboratory Work 1985; 11, 678–681.

  45. Korolyuk M. A., Ivanova L. I., Mayorova I. G. Method for determining the activity of catalase. Laboratory Work 1988; 1, 16–18.

  46. Taburets O. V., Morgaienko O. O., Kondratiuk T. O., Beregova T. V., Ostapchenko L. I. The effect of «Melanin-gel» on the wound healing. Res. J. Pharm. Biol. Chem. Sci. 2016; 7(3), 2031–2036.

  47. Wagener F. A., Carels C. E., Lundvig D. M. Targeting the redox balance in inflammatory skin conditions. Int. J. Mol. Sci. 2013; 14, 9126–9167.

  48. Shaik M. M., Dapkekar A., Rajwade J. M., Jadhav S. H., Kowshik M. Antioxidant- antibacterial containing bi-layer scaffolds as potential candidates for management of oxidative stress and infections in wound healing. J. Mater Sci. Mater Med. 2019; 11, 30(1). doi:10.1007/s10856-018-6212-8

  49. Rajagopalan P., Jain A. P., Nanjappa V., Patel K., Mangalaparthi K. K., Babu N., Cavusoglu N., Roy N., Soeur J., Breton L., Pandey A., Gowda H., Chatterjee A., Misra N. Proteome-wide changes in primary skin keratinocytes exposed to diesel particulate extract-A role for antioxidants in skin health. J. Dermatol. Sci. 2019. pii: S0923-1811(19)30273-7; doi:10.1016/j.jdermsci.2019.08.009

Štítky
Farmacie Farmakologie

Článek vyšel v časopise

Česká a slovenská farmacie

Číslo 2

2020 Číslo 2
Nejčtenější tento týden
Nejčtenější v tomto čísle
Kurzy

Zvyšte si kvalifikaci online z pohodlí domova

Kardiologické projevy hypereozinofilií
nový kurz
Autoři: prof. MUDr. Petr Němec, Ph.D.

Střevní příprava před kolonoskopií
Autoři: MUDr. Klára Kmochová, Ph.D.

Aktuální možnosti diagnostiky a léčby litiáz
Autoři: MUDr. Tomáš Ürge, PhD.

Závislosti moderní doby – digitální závislosti a hypnotika
Autoři: MUDr. Vladimír Kmoch

Role IL-5 v patogenezi zánětu typu 2
Autoři: MUDr. Jakub Novosad, Ph.D.

Všechny kurzy
Kurzy Podcasty Doporučená témata Časopisy
Přihlášení
Zapomenuté heslo

Zadejte e-mailovou adresu, se kterou jste vytvářel(a) účet, budou Vám na ni zaslány informace k nastavení nového hesla.

Přihlášení

Nemáte účet?  Registrujte se

#ADS_BOTTOM_SCRIPTS#