Charakteristika molekuly PCSK9 a její klinický význam
Authors:
T. Vacková 1,2; J. Franeková 1,2; A. Jabor 1,2
Authors‘ workplace:
Oddělení klinické biochemie, Pracoviště laboratorních metod, Institut klinické a experimentální medicíny, Praha
1; Univerzita Karlova, 3. lékařská fakulta, Praha
2
Published in:
Klin. Biochem. Metab., 27, 2019, No. 4, p. 177-182
Overview
Cíl studie: Představit molekulu proprotein konvertázy subtilisin/kexin typu 9 (PCSK9/NARC1), která se významně podílí na lipidovém metabolismu, popsat její chemickou strukturu a vlastnosti, její úlohu v metabolismu a v neposlední řadě i klinický význam.
Typ studie: literární rešerše.
Název a sídlo pracoviště: Institut klinické a experimentální medicíny, Vídeňská 1958/9, 140 21 Praha 4
Závěr: Molekula PCSK9 se díky své významné úloze v lipidovém metabolismu stává velice zajímavým a důležitým stanovovaným analytem napříč klinickými obory.
Klíčová slova:
PCSK9 – LDLR – lipidový metabolismus – doména – degradace – mutace
Úvod
PCSK9 patří do skupiny serinových proteáz (konvertáz), které aktivují neaktivní proproteiny na proteiny biologicky aktivní odštěpením části řetězce, čímž odkryjí aktivní místo molekuly. Druhá část názvu subtilisin/kexin je odvozena od názvů enzymů bakteriální (subtilisin) a kvasinkové (kexin) stěny, s nimiž mají proteázy společné aktivní místo obsahující aminokyseliny (AA) aspartát (Asp), Histidin (His) a Serin (Ser) [1].
Lze klasifikovat celkem devět proproteinových konvertáz (PC). Sedm z nich jsou enzymy, jejichž funkcí je aktivace/inaktivace polypeptidů, hormonů, růstových faktorů a jejich receptorů. Aktivace probíhá štěpením vazby na jednoduchých nebo párových bazických aminokyselinách [2]. Do této skupiny patří PC1 (PCSK1), PC2 (PCSK2), furin (PCSK3), PC4 (PCSK4), PC5 (PCSK5), PACE4 (PCSK6) a PC7 (PCSK7) [3]. Názvy jednotlivých konvertáz jsou odvozeny podle genů, které je kódují, například gen kódující furin je FURIN [2]. Dalším členem je subtilisin kexin izoenzym (SKI-1/S1P, PCSK8), který aktivuje membránové transkripční faktory a ovládá, jako jeden z hlavních enzymů, syntézu mastných kyselin a cholesterolu. Kromě uvedených funkcí se spolupodílí na udržení lipidové homeostázy organismu. Posledním enzymem v této skupině je již zmíněná PCSK9, která negativně reguluje hladinu LDL cholesterolu (LDLC). PCSK9 a SKI-1 ovlivňují lipidový metabolismus štěpením receptorů na nebazických zbytcích nebo prostřednictvím indukované degradace [2, 4].
Struktura PCSK9
Gen pro lidskou PCSK9 je lokalizován na prvním chromozomu (1p32.3) [2, 5, 6]. Tento gen je 22-kb dlouhý a obsahuje 12 exonů kódujících 692 aminokyselin (AA) [2, 7]. Jde o glykoprotein o velikosti 74 kDa, který je syntetizován v hrubém endoplazmatickém retikulu (ER) hepatocytu. PCSK9 je produkována v několika tkáních, a to nejvíce v játrech, v tenkém střevu a ledvinách. Byla také detekována v cerebrospinální tekutině a aterosklerotických plátech [7].
Celý enzym PCSK9 se dá rozdělit celkem do čtyř domén o různém počtu aminokyselin. Autoři uvádějí rozdílná zastoupení AA v jednotlivých doménách dle krystalové struktury. Podle Seidah et al. [8] je zastoupení AA v jednotlivých doménách následující:
- signální peptid (1-30 AA, kódovaný exonem 1),
- prodoména (31-152 AA, kódovaná exony 1-3),
- katalytická doména (153-421 AA, kódována exony 3-8) a krátký úsek, tzv. hinge region o 18 AA (HR, 422-439 AA, kódovaný exony 8-10),
- C-terminální doména, která je bohatá na cysteinové (Cys) a histidinové (His) zbytky (CHRD, 440-692 AA, kódována exony 10-12) [8, 18] (obr 1).
V katalytické doméně jsou obsažena tzv. aktivní místa, která jsou typická pro proteinázy typu K. Jsou to AA Asp186, His226 a Ser386 [2, 9]. V poslední uvedené doméně CHRD můžeme rozlišit tři úseky o různém množství a zastoupení jednotlivých AA: M1, M2 (obsahuje 9 His z celkových 14 v celé CHRD doméně) a M3 [9, 10]. Úseky M1 a M3 jsou zodpovědné za dozrání a sekreci PCSK9 a úsek M2 za degradaci LDL-receptoru (LDLR) [11]. Každý z těchto úseků obsahuje tři disulfidické vazby mezi 1. a 6. Cys, 2. a 5. Cys a 3. a 4. Cys [9, 10, 12]. C-terminální doména obsahuje tři šestivláknové domény, které jsou uspořádané do struktury β-listů a utváří trojrozměrnou symetrii. U této domény se spekuluje o tom, že zprostředkovává protein-protein interakce [9, 10, 12, 13].
Jak už bylo uvedeno, primární struktura PCSK9 v nativní formě je syntetizována v hrubém ER hepatocytu. Zde je odstraněna signální sekvence (1-30 AA) pomocí signální peptidázy a vzniká zymogen proPCSK-9 (31-692 AA) o velikosti 74 kDa. V tomto uspořádání podstupuje proPCSK9 autokatalytické štěpení, při kterém dojde ke štěpení vazby v místech mezi 152. a 153. AA (mezi glutaminem Gln a serinem Ser) a vznikají tak dva segmenty, prosegment (31-152 AA) o velikosti 14 kDa a PCSK9 (153-692 AA) o velikosti 60 kDa, které jsou mezi sebou spojeny nekovalentní vazbou. Místo štěpení je označeno VFAQ↓152SIP, kde VFAQ SIP znamená označení aminokyselin: Val-Phe-Ala-Gln152↓Ser-Ile-Pro [4, 7-9, 14].
Prosegment se váže na aktivní místo katalytické domény molekuly PCSK9, a tím zabrání PCSK9 navázat se na jiné substráty; je enzymaticky inaktivní [8, 11, 14]. Tento komplex je transportován z ER do Golgiho aparátu (GA), odkud je uvolňován na buněčný povrch hepatocytu, kde se váže na cílové proteiny, například na LDL-receptor (LDLR) nebo je dále uvolňován do krevního řečiště [2, 8, 9, 11]. Funkcí vzniklého komplexu prosegment≡PCSK9 je vazba na specifické cílové proteiny a jejich buněčná degradace [8, 11]. Autokatalýza PCSK9 je nutná nejen k aktivaci molekuly, ale také k jejímu uvolnění z ER [14, 15].
Funkcí prodomény (prosegmentu) je alosterická blokace aktivních míst obou zbývajících domén. Jejím odstraněním dojde k odkrytí aktivních míst a až k 10x vyšší afinitě PCSK9 na LDLR, což vede až ke 4x rychlejší degradaci tohoto receptoru. V tomto úseku dochází k častým mutacím, které mohou ovlivnit správnou funkci prodomény, a tím i celé molekuly PCSK9. Prosegment je tedy faktor, který reguluje účinek PCSK9 uvolněním katalytické domény [13, 16].
PCSK9 může být dále štěpena některými dalšími enzymy, např. furinem a PC5/6A, na pozici 218Arg a vznikne tak úsek o velikosti 53 kDa. Tato zkrácená PCSK9 má nižší afinitu vůči LDLR. Obě formy PCSK9 mohou být detekovány jak v lidské plazmě, tak u myší [17].
Struktura LDLR
LDLR je transmembránový glykoprotein, který byl poprvé identifikován v roce 1974 [18]. Jeho hlavní funkcí je odstranění lipoproteinů obsahujících cholesterol a apolipoprotein B (apoB) z cirkulace. Gen pro tento receptor je lokalizovaný na chromozomu 19p13.1 – 13.3 a je přibližně 45 kb dlouhý [6]. Celkově je gen pro LDLR kódován 18 exony a tvoří ho přibližně 839 AA, které jsou uspořádány celkem do pěti domén [19]:
- první je ligand-vázající doména na N-terminálním konci proteinu (obsahuje 322 AA), která se dále dělí na sedm částí R1-R7, které jsou bohaté na cysteiny. Každá z R částí obsahuje 40 AA a tři atomy vápníku, které jsou nezbytné pro protein-proteinové interakce [13, 19, 24, 29],
- druhou doménou je epidermální růstový faktor (EGF, je složen přibližně z 350 AA) [19]. Jde o prekurzor homologní domény, který obsahuje dvojici opakujících se domén EGF-A (40 AA) a EGF-B (40 AA), které jsou od domény EGF-C (40 AA) odděleny β-šroubovicovou doménou [20]. Tento úsek obsahuje 280 AA a spolupodílí se na uvolnění lipoproteinů z vazby v kyselém pH [20],
- následuje doména vázající sacharid přes hydroxylovou skupinu (OH) serinu (Ser) nebo threoninu (Thr), obsahující 48 AA [19]. Tento úsek není zahrnut do navazování ligandů, internalizace a recyklace receptoru [19],
- předposlední doménou je transmembránová (cytosolová) doména (TM) obsahující 22 AA,
- poslední je cytosolový zbytek (cytoplazmatický ocas), který obsahuje 50 AA a je nezbytný pro správnou internalizaci receptoru [19] (obr. 2). LDLR se syntetizuje v ER a jeho molekulová hmotnost je 120 kDa. Z ER se LDLR transportuje do GA, kde postupně dochází ke glykosylacím a na povrchu buňky se formuje zralý glykoprotein o molekulové hmotnosti 160 kDa, který je schopen na sebe navázat LDLC a další lipoproteiny obsahující apolipoprotein B (apoB) a podstoupit proces endocytózy [18, 21].
Úloha PCSK9 a LDLR v metabolismu
Existují dvě metabolické dráhy PCSK9, a to intracelulární a extracelulární. Při vnitrobuněčné cestě uvolněná PCSK9 z GA interaguje přímo s LDLR a vzniklý komplex je transportován přímo do lysozomu, kde dochází k jeho degradaci. Při extracelulární dráze je PCSK9 uvolněna na povrch hepatocytu, kde se naváže na LDLR. Odtud je tento komplex internalizován do endozomu a následně do lysozomu, kde dojde k degradaci [11, 22, 23].
Cyklus LDLR
Na buněčné stěně dojde k otevření konformace ligand-vázající domény, a tím je umožněno navázání lipoproteinů na LDLR [24]. Cytosolová doména LDLR obsahuje sekvenci aminokyselin FDNPVY (F-Fenylalanin, D-Aspartát, N-Asparagin, P-Prolin, V-Valin, Y-Tyroxin), která je nutná pro rychlou endocytózu zprostředkovanou přes váčky pokryté klatrinem (clathrin-coated pits) [25, 26]. Internalizace vzniklého komplexu LDLR≡LDLC do hepatocytu je kontrolována pomocí LDL receptorového adaptorového proteinu (LDLRAP1/ARH) [6], který je můstkem mezi LDLR a klatrinem [27]. Po endocytóze je komplex transportován do endozomu. Kyselé pH endozomu způsobí změnu konformace LDLR, a to tím, že β-šroubovicová doména uzavírá „otevřenou“ ligand-vázající doménu, což má za následek odštěpení lipoproteinové částice z komplexu [24, 26, 28].
Tato částice následně putuje do lysozomu, kde je pomocí cholesterol esterázy hydrolyzována na cholesterol a volné mastné kyseliny a proteinová část lipoproteinu je dále degradována na aminokyseliny [26].
LDLR se recykluje a vrací se zpět na povrch membrány, pokud není zachycen PCSK9 v intracelulární metabolické dráze, viz výše. Takto se může recyklovat až 150x [24, 26].
Komplex PCSK9≡LDLR
Mechanismus vazby PCSK9 na LDLR probíhá přes EGF-A doménu tohoto receptoru na buněčné stěně hepatocytu při neutrálním pH [29]. Při snížení pH ze 7,0 na 5,2 vzroste afinita PCSK9 k LDLR až 50x, proto je vazba komplexu LDLR≡PCSK9 po internalizaci do buňky mnohem silnější [29]. V kyselém prostředí prodoména stabilizuje solné můstky s β-šroubovicovou doménou LDLR a pozitivně nabitá CHRD doména se váže na záporně nabitou ligand-vázající doménu LDLR. Tím dojde k blokaci receptoru a tato otevřená konformace LDLR brání zpětné recyklaci LDLR na povrch membrány a receptor směřuje do lysozomu, kde je degradován [28, 29].
Ve studii in vitro bylo zjištěno, že jedním ze spouštěčů degradace LDLR v lysozomu je vznik dimeru PCSK9, který vzniká mnohem snadněji v kyselém prostředí lysozomu než v neutrálním prostředí a zvyšuje degradaci LDLR oproti monomeru PCSK9. Zdá se, že katalytická doména PCSK9 sehrává významnou roli při vzniku polymeru, při aktivaci molekuly, správném složení a sekreci, ale neovlivňuje degradaci LDLR [30].
Reakce PCSK9 s apolipoproteinem B (apoB)
H. Sun a kol. [31] ve své studii ukázali, že dlouhodobá exprese proteinu PCSK9 u myší vede ke zvýšené koncentraci plazmatického cholesterolu, triacylglycerolů (TAG) a apoB bez ohledu na přítomnost LDLR. H. Sun a kol. [31] popsali přímou interakci mezi PCSK9 a apoB za fyziologických podmínek nezávisle na LDLR [31]. Při této interakci je zabráněno degradaci apoB, který může být odbouráván dvěma hlavními metabolickými cestami, a to buď přes proteazom nebo přes autofagozomy/lysozomy a roste tak jeho koncentrace v krvi [32].
ApoB100 je primárně exprimován v játrech. Skládá se celkem ze 4536 AA, z toho je 25 Cys (16 z nich je součástí disulfidické vazby) a 20 tvoří glykosidickou vazbu přes N konec AA [33]. Kromě apoB100 existuje i zkrácená forma apoB48, která je exprimována kromě jater také ve střevě [33]. Tato zkrácená forma vzniká při post-transkripční modifikaci apoB mRNA na kodonu 2153, který přenáší glutaminový kodon jako stop kodon ve 48 % délky apoB100. Oba apoB obsahují amfipatické NH2 domény a hydrofobní domény složené z β-listů [33]. ApoB100 navíc obsahuje α-helikální úsek, další doménu složenou z β-listů a další α-helikální doménu [33].
Mutace PCSK9
Můžeme rozlišit dva základní typy mutací v molekule PCSK9. Jedním z nich je tzv. gain-of-function mutace (GOF), při které dochází ke snížení koncentrace LDLR a následně navýšení koncentrace LDLC v krvi [8]. Tento typ mutace se fenotypově projeví jako familiární hypercholesterolémie (FH) [9, 34]. Druhý typ, tzv. loss-of-function mutace (LOF), vede k navýšení koncentrace LDLR, a tím se urychlí vychytávání LDLC z krve a sníží se jeho koncentrace. Tato mutace má charakter ochrany před koronárními chorobami [8, 9, 34].
GOF mutace může být způsobena zařazením jiné AA v nukleotidu, jedná se o tzv. missense mutaci. V tomto případě dojde k záměně buď na 374. AA (D374Y) nebo na 127. AA (S127R) [34].
Mutace D374A zvyšuje afinitu vazby PCSK9 na LDLR. Aminokyseliny, které mohou být zařazeny v nukleotidu na místo 374Asp jsou Tyr, Ala, Glu, Phe, Lys nebo Leu. Mutace na 127Ser (S127R) nemá přímý vliv na sílu vazby PCSK9 na LDLR, ale urychluje vychytávání LDLR, a tím způsobuje navyšování koncentrace LDLC [34]. Aminokyseliny, které mohou nahradit Ser na pozici 127 v nukleotidu, jsou Arg, Ala, Asp, Lys, Leu a Thr [9,34]. Kombinace obou mutací má aditivní účinek na funkci PCSK9 [34].
LOF mutace může být způsobena buď missense mutací (R46L, L253F, A433T) nebo nonsense mutací (Y142x a C679x), které jsou asociovány s nízkými koncentracemi LDLC a se sníženým rizikem aterosklerózy [9,34].
Objev obou typů mutací a jejich působení na metabolismus lipidů vedly k vývoji protilátek blokujících PCSK9. Tyto protilátky jsou dnes v klinickém použití, zatím jsou k dispozici dvě blokující molekuly – alirocumab a evolocumab. Měření koncentrace PCSK9 může pomoci stratifikovat riziko rozvoje aterosklerózy u pa-cientů a přispět k objasnění efektu terapie.
Závěr
Molekula PCSK9 byla objevena teprve nedávno, ale její významná úloha v lipidovém metabolismu je zřejmá. Z tohoto důvodu je testována a zkoumána napříč klinickými obory včetně farmaceutického odvětví. Stanovení této molekuly má velký potenciál a do budoucna bude jistě součástí běžného vyšetření.
Autoři prohlašují, že nejsou ve střetu zájmů
Do redakce došlo 22. 8. 2019
Adresa pro korespondenci:
Mgr. Tereza Vacková
Oddělení klinické biochemie
Pracoviště laboratorních metod
Institut klinické a experimentální medicíny
Vídeňská 1958/9
140 21 Praha 4
E-mail: vact@ikem.cz
Sources
1. Seidah, N. G., Chrétien, M., Day, R. The family of subtilisin/kexin like pro-protein and pro-hormone convertases: Divergent or shared functions. Biochimie, 1994, Vol. 76(3-4), p. 197-209.
2. Seidah, N. G., Prat, A. The biology and therapeutic targeting of the proprotein convertases. Nat Rev Drug Discov., 2012, Vol. 11(5), p. 367-383.
3. Artenstein, A. W., Opal, S. M. Proprotein convertases in health and disease. N Engl J Med., 2011, Vol. 365(26), p. 2507-2518.
4. Seidah, N. G., Prat, A. The proprotein convertases are potential targets in the treatment of dyslipidemia. J Mol Med., 2007, Vol. 85(7), p. 685-696.
5. Wiciński, M., Źak, J., Malinowski, B., Popek, G., Grześk, G. PCSK9 signaling pathways and their potential importance in clinical practice. EPMA J., 2017, Vol. 8(4), p. 391-402.
6. OMIM. An Online Catalog of Human Genes and Genetic Disorders. Dostupné z WWW: https://omim.org/entry/607786, https://omim.org/entry606945?search=606945&highlight=606945, https://omim.org/entry605747?search=605747&highlight=605747
7. Benjannet, S., Rhainds, D., Essalmani, R., et al. NARC-1/PCSK9 and its natural mutants: zymogen cleavage and effects on the low density lipoprotein (LDL) receptor and LDL cholesterol. J Biol Chem., 2004, Vol. 279(47), p. 48865-48875.
8. Seidah, N. G., Awan, Z., Chrétien, M., Mbikay, M. PCSK9: a key modulator of cardiovascular health. Circ Res., 2014, Vol. 114(6), p. 1022-1036.
9. Cunningham, D., Danley, D. E., Geoghegan, K. F., et al. Structural and biophysical studies of PCSK9 and its mutants linked to familial hypercholesterolemia. Nat Struct Mol Biol., 2007, Vol. 14(5), p. 413-419.
10. Piper, D. E., Jackson, S., Liu, Q., et al. The Crystal Structure of PCSK9: A Regulator of Plasma LDL-Cholesterol. Structure, 2007, Vol. 15(5), p. 545-552.
11. Nishikido, T., Ray, K. K. Non-antibody approaches to proprotein convertase subtilisin kexin 9 inhibition: siRNA, antisense oligonucleotides, adnectins, vaccination, and new attempts at small-molecule inhibitors based on new discoveries. Front Cardiovasc Med., 2019, Vol. 5, p. 1-17.
12. Hampton, E. N., Knuth, M. W., Li, J., Harris, J. L., Lesley, S. A., Spraggon, G. The self-inhibited structure of full-length PCSK9 at 1.9 Å reveals structural homology with resistin within the C-terminal domain. Proc Natl Acad Sci USA, 2007, Vol. 104(37), p. 14604-14609.
13. Kwon, H. J., Lagace, T. A., McNutt, M. C., Horton, J. D., Deisenhofer, J. Molecular basis for LDL receptor recognition by PCSK9. Proc Natl Acad Sci USA, 2008, Vol. 105(6), p. 1820-1825.
14. Benjannet, S., Hamelin, J., Chrétien, M., Seidah, N. G. Loss- and gain-of-function PCSK9 variants: cleavage specificity, dominant negative effects, and low density lipoprotein receptor (LDLR) degradation. J Biol Chem., 2012, Vol. 287(40), p. 33745-33755.
15. Seidah, N. G., Benjannet, S., Wickham, L., et al. The secretory proprotein convertase 1 (NARC-1): Liver regeneration and neuronal differentiation. Proc Natl Acad Sci USA, 2003, Vol. 100(3), p. 928-933.
16. Lagace, T. A., Curtis, D. E., Garuti, R., et al. Secreted PCSK9 decreases the number of LDL receptors in hepatocytes and in livers of parabiotic mice. The J Clin Invest., 2006, Vol. 116(11), p. 2995-3005.
17. Han, B., Eacho, P. I., Knierman M. D., et al. Isolation and characterization of the circulating truncated form of PCSK9. J Lipid Res., 2014, Vol. 55(7), p. 1505-1514.
18. Melendez, Q. M., Krishnaji, S. T., Wooten, C. J., Lopez, D. Hypercholesterolemia: The role of PCSK9. Arch Biochem Biophys., 2017, Vol. 625-626, p. 39-53.
19. Yamamoto, T., Davis, C. G., Brown, M. S., et al. The human LDL receptor: a cysteine-rich protein with multiple Alu sequences in its mRNA. Cell, 1984, Vol. 39(1), p. 27-38.
20. Russel, D. W., Brown, M. S., Goldstein, J. L. Different combinations of cysteine-rich repeats mediate binding of low density lipoprotein receptor to two different proteins. J Biol Chem., 1989, Vol. 264(36), p. 21682-21688.
21. Tolleshaug, H., Goldstein, J. L., Schneider, W. J., Brown, M. S. Posttranslational processing of the LDL receptor and its genetic disruption in familial hypercholesterolemia. Cell, 1982, Vol. 30(3), p. 715-724.
22. Poirier, S. Mayer, G., Poupon, V., et al. Dissection of the endogenous cellular pathways of PCSK9-induced low density lipoprotein receptor degradation: evidence for an intracellular route. J Biol Chem., 2009, Vol. 284(42), p. 28856-28864.
23. Maxwell, K. N., Fisher, E. A., Breslow, J. L. Overexpression of PCSK9 accelerates the degradation of the LDLR in a post-endoplasmic reticulum compartment. Proc Natl Acad Sci USA, 2005, Vol. 102(6), p. 2069-2074.
24. Zhang, D. W., Garuti, R., Tang, W. J., Cohen, J. C., Hobbs, H. H. Structural requirements for PCSK9-media-ted degradation of the low-density lipoprotein receptor. Proc Natl Acad Sci USA, 2008, Vol. 105(35), p. 13045-13050.
25. Chen, W. J., Goldstein, J. L., Brown, M. S. NPXY, a sequence often found in cytoplasmic tails, is required for coated pit-mediated internalization of the low density lipoprotein receptor. J Biol Chem., 1990, Vol. 265(6), p. 3116-3123.
26. Gent, J., Braakman, I. Low-density lipoprotein receptor structure and folding. Cell Mol Life Sci., 2004, Vol. 61(19-20), p. 2461-2470.
27. Garuti, R., Jones, Ch., Li, W. P., et al. The modular adaptor protein autosomal recessive hypercholestero-lemia (ARH) promotes low density lipoprotein receptor clustering into clathrin-coated pits. J Biol Chem., 2005, Vol. 280(49), p. 40996-41004.
28. Rudenko, G., Henry, L., Henderson, K., et al. Structure of the LDL receptor extracellular domain at endosomal pH. Science, 2002, Vol. 298(5602), p. 2353-2358.
29. Zhang, D. W., Lagace, T. A., Garuti, R., et al. Bin-ding of proprotein convertase subtilisin/kexin type 9 to epidermal growth factor-like repeat A of low density lipoprotein receptor decreases receptor recycling and increases degradation. J Biol Chem., 2007, Vol. 282(25), p. 18602-18612.
30. Fan, D., Yancey, P. G., Qiu, S., et al. Self-association of human PCSK9 correlates with its LDLR-degrading activity. Biochemistry, 2008, Vol. 47(6), p. 1-22.
31. Sun, H., Samarghandi, A., Zhang, N., Yao, Z., Xiong, M., Teng, B. B. Proprotein convertase subtilisin/kexin type 9 interacts with apolipoprotein B and prevents its intracellular degradation, irrespective of the low-density lipoprotein receptor. Arterioscler Thromb Vasc Biol., 2012, Vol. 32(7), p. 1585-1595.
32. Gillian-Daniel, D. L., Bates, P. W., Tebon, A., Attie, A. D. Endoplasmic reticulum localization of the low density lipoprotein receptor mediates presecretory degradation of apolipoprotein B. Proc Natl Acad Sci USA, 2002, Vol. 99(7), p. 4337-4342.
33. Fisher, E. A., Ginsberg H. N. Complexity in the secretory pathway: the assembly and secretion of apolipoprotein B-containing lipoproteins. J Biol Chem, 2002, Vol. 277(20), p. 17377-17380.
34. Pandit, S., Wisniewski, D., Santoro, J. C., et al. Functional analysis of sites within PCSK9 responsible for hypercholesterolemia. J Lipid Res., 2008, Vol. 49(6), p. 1333-1343.
Labels
Clinical biochemistry Nuclear medicine Nutritive therapistArticle was published in
Clinical Biochemistry and Metabolism
2019 Issue 4
Most read in this issue
- Hypernatrémie – frekvence, příčiny, patobiochemie, klinika a terapie
- Nespecifické a nejednoznačné pozitivní laboratorní nálezy
- Oxysteroly, biochemie a klinický význam
- Makro-komplexy a možnosti jejich detekce