Dlouhé nekódující molekuly RNA u cervikálních nádorů

Stáhnout PDF English version

Autoři: M. Taheri ¹; S. Ghafouri-Fard ²
Působiště autorů: Student Research Committee, Shahid Beheshti University of Medical Sciences, Tehran, Iran ¹; Department of Medical Genetics, Shahid Beheshti University of Medical Sciences, Tehran, Iran ²
Vyšlo v časopise: Klin Onkol 2018; 31(6): 403-408
Kategorie: Přehled
doi: https://doi.org/10.14735/amko2018403

Souhrn

Východiska:

Rakovina děložního čípku jako běžný urogenitální nádor způsobuje u žen značné zdravotní problémy. Byla vynaložena snaha o identifikaci patogeneze za účelem nalezení cílených terapií. Bylo prokázáno, že dlouhé nekódující ribonukleové kyseliny (lncRNA) regulují několik signálních drah a genů souvisejících s nádory, což přispívá k patogenezi lidských malignit vč. rakoviny děložního čípku. V rámci prezentovaného článku jsme do prosince 2017 vyhledávali klíčová slova „cervical cancer“ (rakovina děložního čípku) nebo „cervical neoplasm“ (cervikální novotvar) a „long non-coding RNA“ (dlouhá nekódující RNA) nebo „lncRNA“, publikovaná v databázi PubMed, Google scholar, Web of Science a Scopus.

Cíl:

Zjistit, jakou roli hrají lncRNA v rakovině děložního čípku.

Závěry:

LncRNA ovlivňují patogenezi rakoviny děložního čípku prostřednictvím četných mechanismů, jako je vytváření tzv. scaffolds pro sestavení proteinových komplexů, sloužící jako tzv. directors pro získávání proteinů, fungujících jako transkripční zesilovače pomocí remodelování chromatinu, sloužící jako tzv. návnady k uvolnění proteinů z chromatinu nebo zvrácení účinků jiné regulační nekódující RNA jako jsou mikroRNA. Analýza signálních drah ukázala, že v procesu patogeneze rakoviny děložního čípku několik lncRNA reguluje dráhy PI3K/ Akt/ mTOR, Wnt-β catenin a Notch signální dráhy. Navíc exprese několika lncRNA byla spojena s infekcí virem lidského papilomu. Identifikace lncRNA, které mění signální dráhy související s nádory, a následná expresní analýza těchto lncRNA ve vzorcích pacientů by mohly pomoci získat efektivní cílené terapie.

Klíčová slova:

lncRNA – nádor děložního čípku – onkogen – tumor supresorový gen

Autoři deklarují, že v souvislosti s předmětem studie nemají žádné komerční zájmy.

Redakční rada potvrzuje, že rukopis práce splnil ICMJE kritéria pro publikace zasílané do biomedicínských časopisů.

Zdroje

1. Wan DC, Wang KC. Long noncoding RNA: significance and potential in skin biology. Cold Spring Harb Perspect Med 2014; 4(5): pii: a015404. doi: 10.1101/ cshperspect.a015404.

2. Dianatpour A, Ghafouri-Fard S. Long non coding RNA expression intersecting cancer and spermatogenesis: a systematic review. Asian Pac J Cancer Prev 2017; 18(10): 2601– 2610. doi: 10.22034/ APJCP.2017.18.10.2601.

3. Soudyab M, Iranpour M, Ghafouri-Fard S. The role of long non-coding RNAs in breast cancer. Arch Iran Med 2016; 19(7): 508– 517. doi: 0161907/ AIM.0011.

4. Dianatpour A, Ghafouri-Fard S. The role of long non coding RNAs in the repair of DNA double strand breaks. Int J Mol Cell Med 2017; 6(1): 1– 12.

5. Oliva-Rico D, Herrera LA. Regulated expression of the lncRNA TERRA and its impact on telomere biology. Mech Ageing Dev 2017; 167: 16– 23. doi: 10.1016/ j.mad.2017.09.001.

6. Mowel WK, Kotzin JJ, McCright SJ et al. Control of immune cell homeostasis and function by lncRNAs. Trends Immunol 2018; 39(1): 55– 69. doi: 10.1016/ j.it.2017.08.009.

7. Faramarzi S, Dianatpour A, Ghafouri-Fard S. Discovering the role of long non-coding RNAs in regulation of steroid receptors signaling in cancer. J Biol and Today’s World 2017; 6(12): 248– 258. doi: 10.15412/ J.JBTW.01061202.

8. Kornfeld JW, Brüning JC. Regulation of metabolism by long, non-coding RNAs. Front Genet 2014; 5: 57. doi: 10.3389/ fgene.2014.00057.

9. Iranpour M, Soudyab M, Geranpayeh L et al. Expression analysis of four long noncoding RNAs in breast cancer. Tumour Biol 2016; 37(3): 2933– 2940. doi: 10.1007/ s13277-015-4135-2.

10. Nikpayam E, Tasharrofi B, Sarrafzadeh S et al. The role of long non-coding RNAs in ovarian cancer. Iran Bio-med J 2017; 21(1): 3– 15. doi: 10.6091/ .21.1.24.

11. Nikpayam E, Soudyab M, Tasharrofi B et al. Expression analysis of long non-coding ATB and its putative target in breast cancer. Breast Dis 2017; 37(1):11– 20. doi: 10.3233/ BD-160264.

12. Taheri M, Omrani MD, Ghafouri-Fard S. Long non-coding RNAs expression in renal cell carcinoma. J Biol Today’s World 2017; 6(12): 240– 247. doi: 10.15412/ J.JBTW.01061201.

13. Tasharrofi B, Soudyab M, Nikpayam E et al. Comparative expression analysis of hypoxia-inducible factor-alpha and its natural occurring antisense in breast cancer tissues and adjacent noncancerous tissues. Cell Biochem Funct 2016; 34(8): 572– 578. doi: 10.1002/ cbf.3230.

14. Taheri M, Omrani MD, Ghafouri-Fard S. Long non-coding RNA expression in bladder cancer. Biophys Rev 2017; 10(4): 1205– 1213. doi: 10.1007/ s12551-017-0379-y.

15. Taheri M, Habibi M, Noroozi R et al. HOTAIR genetic variants are associated with prostate cancer and benign prostate hyperplasia in an Iranian population. Gene 2017; 613: 20– 4. doi: 10.1016/ j.gene.2017.02.031.

16. Taheri M, Pouresmaeili F, Omrani MD et al. Association of ANRIL gene polymorphisms with prostate cancer and benign prostatic hyperplasia in an Iranian population. Biomark Med 2017; 11(5): 413– 422. doi: 10.2217/ bmm-2016-0378.

17. Motevaseli E, Azam R, Akrami SM et al. The effect of lactobacillus crispatus and lactobacillus rhamnosusculture supernatants on expression of autophagy genes and HPV E6 and E7 oncogenes in the HeLa cell line. Cell J 2016; 17(4): 601– 607.

18. Taherian-Esfahani Z, Abedin-Do A, Nouri Z et al. Lactobacilli differentially modulate mTOR and Wnt/ β-catenin pathways in different cancer cell lines. Iran J Cancer Prev 2016; 9(3): e5369. doi: 10.17795/ ijcp-5369.

19. Wang H, Zhao Y, Chen M et al. Identification of novel long non-coding and circular RNAs in human papillomavirus-mediated cervical cancer. Front Microbiol 2017; 8: 1720. doi: 10.3389/ fmicb.2017.01720.

20. Goedert L, Plaça JR, Nunes EM et al. Long noncoding RNAs in HPV-induced oncogenesis. Adv Virol 2016; 6: 1. doi: 10.4137/ ATV.S29816.

21. Jiang Y, Li Y, Fang S et al. The role of MALAT1 correlates with HPV in cervical cancer. Oncol Lett 2014; 7(6): 2135– 2141. doi: 10.3892/ ol.2014.1996.

22. Sun R, Qin C, Jiang B et al. Down-regulation of MALAT1 inhibits cervical cancer cell invasion and metastasis by inhibition of epithelial-mesenchymal transition. Mol Biosyst 2016; 12(3): 952– 962. doi: 10.1039/ c5mb00685f.

23. Sharma S, Mandal P, Sadhukhan T et al. Bridging links between long noncoding RNA HOTAIR and HPV oncoprotein E7 in cervical cancer pathogenesis. Sci Rep 2015; 5: 11724. doi: 10.1038/ srep11724.

24. Wang X, Wang Z, Wang J et al. LncRNA MEG3 has anti-activity effects of cervical cancer. Biomed Pharmacother 2017; 94: 636– 643. doi: 10.1016/ j.biopha.2017.07.056.

25. Wen Q, Liu Y, Lyu H et al. Long noncoding RNA GAS5, which acts as a tumor suppressor via microRNA 21, regulates cisplatin resistance expression in cervical cancer. Int J Gynecol Cancer 2017; 27(6): 1096– 1108. doi: 10.1097/ IGC.0000000000001028.

26. Jin XJ, Chen XJ, Hu Y et al. LncRNA-TCONS_00026907 is involved in the progression and prognosis of cervical cancer through inhibiting miR-143-5p. Cancer Med 2017; 6(6): 1409– 1423. doi: 10.1002/ cam4.1084.

27. Sun G, Wang C, Zhang H. Long non-coding RNA XIST promotes cervical cancer cell epithelial-mesenchymal transition through the Wnt/ beta-catenin pathway. Int J Clin Exp Pathol 2017; 10(2): 2333– 2339.

28. Zhang J, Gao Y. CCAT-1 promotes proliferation and inhibits apoptosis of cervical cancer cells via the Wnt signaling pathway. Oncotarget 2017; 8(40): 68059– 68070. doi: 10.18632/ oncotarget.19155.

29. Lee M, Kim HJ, Kim SW et al. The long non-coding RNA HOTAIR increases tumour growth and invasion in cervical cancer by targeting the Notch pathway. Oncotarget 2016; 7(28): 44558– 44571. doi: 10.18632/ oncotarget.10065.

30. Kim HJ, Lee DW, Yim GW et al. Long non-coding RNA HOTAIR is associated with human cervical cancer progression. Int J Oncol 2015; 46(2): 521– 30. doi: 10.3892/ ijo.2014.2758.

31. Zheng P, Xiong Q, Wu Y et al. Quantitative proteomics analysis reveals novel insights into mechanisms of action of long noncoding RNA hox transcript antisense intergenic RNA (HOTAIR) in HeLa Cells. Mol Cell Proteomics 2015; 14(6): 1447– 1463. doi: 10.1074/ mcp.M114.043984.

32. Zhang L, Qian H, Sha M et al. Downregulation of HOTAIR expression mediated anti-metastatic effect of artesunate on cervical cancer by inhibiting COX-2 expression. PLoS One 2016; 11(10): e0164838. doi: 10.1371/ journal.pone.

33. Peng L, Yuan X, Jiang B et al. LncRNAs: key players and novel insights into cervical cancer. Tumour Biol 2016; 37(3): 2779– 2788. doi: 10.1007/ s13277-015-4663-9.

34. Hu Y, Sun X, Mao C et al. Upregulation of long noncoding RNA TUG1 promotes cervical cancer cell proliferation and migration. Cancer Med 2017; 6(2): 471– 482. doi: 10.1002/ cam4.994.

35. Kim HJ, Eoh KJ, Kim LK et al. The long noncoding RNA HOXA11 antisense induces tumor progression and stemness maintenance in cervical cancer. Oncotarget 2016; 7(50): 83001– 83016. doi: 10.18632/ oncotarget.12863.

36. Sun NX, Ye C, Zhao Q et al. Long noncoding RNA-EBIC promotes tumor cell invasion by binding to EZH2 and repressing E-cadherin in cervical cancer. PloS One 2014; 9(7): e100340. doi: 10.1371/ journal.pone.0100340.

37. Sun J, Chu H, Ji J et al. Long non-coding RNA HOTAIR modulates HLA-G expression by absorbing miR-148a in human cervical cancer. Int J Oncol 2016; 49(3): 943– 952. doi: 10.3892/ ijo.2016.3589.

38. Bolha L, Ravnik-Glavac M, Glavac D. Long noncoding RNAs as biomarkers in cancer. Dis Markers 2017; 2017: 7243968. doi: 10.1155/ 2017/ 7243968.

39. Zhang J, Yao T, Lin Z et al. Aberrant methylation of MEG3 functions as a potential plasma-based biomarker for cervical cancer. Sci Rep 2017; 7: 6271. doi: 10.1038/ s41598-017-06502-7.

40. Campos-Parra AD, Padua-Bracho A, Pedroza-Torres A et al. Comprehensive transcriptome analysis identifies pathways with therapeutic potential in locally advanced cervical cancer. Gynecol Oncol 2016; 143(2): 406– 413. doi: 10.1016/ j.ygyno.2016.08.327.