Citlivosť kmeňov Staphylococcus aureus rastúcich v biofilme na vankomycín, gentamicín a rifampicín
Authors:
D. Kotulová; L. Slobodníková
Authors‘ workplace:
Mikrobiologický ústav LFUK a FNsP, Bratislava, Slovenská republika
Published in:
Epidemiol. Mikrobiol. Imunol. 59, 2010, č. 2, s. 80-87
Overview
Cieľ práce.
Detekovať tvorbu biofilmu u kmeňov Staphylococcus aureus a určiť koncentrácie vankomycínu, gentamicínu a rifampicínu, ktoré zabránia množeniu S. aureus v biofilme (minimálne biofilm inhibujúce koncentrácie - MBIC), alebo vedú k jeho eradikácii (minimálne biofilm-eradikujúce koncentrácie – MBEC). Porovnať tieto údaje s hodnotami minimálnej inhibičnej koncentrácie (MIC) a minimálnej baktericídnej koncentrácie (MBC) u identických kmeňov baktérií, rastúcich v planktonickej forme, v ktorej sa bežne testuje v laboratóriu citlivosť na antiinfekčné liečivá pre potreby individualizovanej terapie.
Pacienti a etódy:
Do testovaného súboru baktérií sa zaradilo 15 kmeňov S. aureus, izolovaných z entrálnych venóznych katétrov, intratracheálnych kanýl a anových drénov od pacientov FNsP Bratislava-Staré Mesto. Charakterizovali sa ich vybrané faktory virulencie. Schopnosť tvoriť biofilm sa určila modifikovanou mikrometódou s ryštalickou violeťou (KV). Prítomnosť živých buniek v biofilme sa určovala s použitím 3-(4,5-dimetyltiazol-2-yl)-2,5-difenyl tetrazólium bromidu (MTT). MIC a BC vankomycínu, gentamicínu a ifampicínu sa testovala v planktonickej forme rastu kmeňov S. aureus bujónovou mikrodilučnou metódou. Účinok týchto antibiotík na inhibíciu a radikáciu živých baktérií v iofilme sa testoval modifikovanou mikrodilučnou metódou. Výsledky sa štatisticky hodnotili Studentovým t‑testom.
Výsledky:
Podľa našich výsledkov všetky kmene tvorili biofilm a ba dva z ich ho tvorili slabo. Pri hodnotení metabolickej aktivity baktérií v iofilme (MTT) sa zistila u ich stredná alebo vysoká aktivita. Pri sledovaní účinku vankomycínu in vitro sa zistilo, že hodnoty MIC a BIC u ankomycínu sú u 0 % kmeňov identické. Hodnoty MBEC vankomycínu sú však vyššie ako MBC u šetkých vyšetrovaných kmeňov, ich hodnota patrí podľa kritérií Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) do kategórie rezistencie a oto antibiotikum už nie je použiteľné v erapii. Pri hodnotení výsledkov gentamicínu sa ukázalo, že in vitro inhibuje biofilm v oncentráciách, ktoré sa zaraďujú podľa CLSI do kategórie citlivý, avšak hodnoty, potrebné na eradikáciu, sú interpretované ako rezistencia kmeňa. Pri testovaní rifampicínu sa hodnoty MIC aj MBIC pohybovali v ategórii citlivý. Hodnoty MBC sa interpretovali v ategórii citlivý, ale MBEC už v 3 % ako rezistentný a 3 % ako intermediárne citlivý. Rozdiely v ameraných hodnotách MIC a BIC gentamicínu a ifampicínu a BC a BEC všetkých testovaných antibiotík boli štatisticky signifikantné.
Záver:
Nami sledované kmene S. aureus sú v iofilme eradikované iba vyššími koncentráciami vankomycínu, gentamicínu a ifampicínu, pričom hodnoty MBEC použiteľné v erapii dosahoval iba ifampicín.
Z ľadiska poskytovania spoľahlivých výsledkov pre voľbu terapie antiinfekčnými liečivami bude perspektívne potrebné zisťovať in vitro tvorbu biofilmu, estovať MBIC a BEC liečiv štandardizovanou metódou, interpretovať výsledky vo vzťahu k aktériám rastúcim v iofilme a tanoviť hraničné koncentrácie MBIC a BEC obdobne ako je to pri kritériách pre hodnotenie MIC a BC.
Kľúčové slová:
S. aureus – biofilm – citlivosť na antimikrobiálne liečivá – vankomycín – gentamicín – rifampicín.
Ďakujeme za technickú spoluprácu V. Augustovičovej, G. Skýpalovej a Ing. J. Havelovej.
Prof. MUDr. Daniela
Kotulová, PhD.
Mikrobiologický ústav LF UK
a FBsP
Sasinkova 4/II.
811 08 Bratislava
Slovenská republika
e-mail:
daniela.kotulova@fmed.uniba.sk
Sources
1. Aboltins, C. A., Page, M. A., Buising, K. L., Jenney, A. W. J., et al. Treatment of staphylococcal prosthetic joint infections with debridement, prosthesis retention and oral rifampicin and fusidic acid. Clin Microbiol Infect, 2007, 13, 6, 586-591.
2. Balaban, N., Cirioni, O., Giacometti, A., Ghiselli, R., et al. Treatment of Staphylococcus aureus biofilm infection by the quorum-sensing inhibitor RIP. Antimicrob Agents Chemother, 2007, 51, 6, 2226-2229.
3. Belley, A., Neesham-Grenon, E., McKayG., Arhin, F. F., et al. Oritavancin kills stationary-phase and biofilm Staphylococcus aureus cells in vitro. Antimicrob Agents Chemother, 2009, 53, 3, 918-925.
4. Boles, B. R., Horswill, A. R. agr-mediated dispersal of Staphylococcus aureus biofilms. PLoS Pathog, 2008, 4, 4, e1000052.
5. Clinical and Laboratory Standard Institute. Performance Standards for an Antimicrobial Disc Suspectibility Tests; Approved-Standard-Ninth Edition; Clinical and Laboratory Standards document M2-A9, Clinical and Laboratory Standards Institute, 940 West Valley Road, Suite 1400, Wayne, Pennsylvania 19087-1898; USA, 2006a: 37.
6. Clinical and Laboratory Standard Institute. Methods for Dilution Antimicrobial Suspectibility Test for Bacteria that Grow Aerobicaly; Approved-Standard-Seventh Edition; Clinical and Laboratory Standards document M7-A7, Clinical and Laboratory Standards Institute, 940 West Valley Road, Suite 1400, Wayne, Pennsylvania 19087-1898; USA, 2006b: 49.
7. Clinical and Laboratory Standard Institute. Performance Standards for Antimicrobial suspectibility Tests; Approved-Standard-Nineth Edition; Clinical and Laboratory Standards document M100-S18, Clinical and Laboratory Standards Institute, 940 West Valley Road, Suite 1400, Wayne, Pennsylvania 19087-1898; USA, 2008: 183.
8. Cramton, S. E., Götz, F. Biofilm development in staphylococcus. In Ghannoun, M., O`Toole, G. A. (eds) Microbial biofilms, ASM Press, Washington, DC, 2004, 64-84. ISBN 1-55581-294-295.
9. Donlan, R. M. Biofilms and device-associated infections. Emerg Infect Dis, 2001, 7, 2, 277-281.
10. Fitzpatrick, F., Humphreys, H., O`Gara, J. P. The genetics of staphylococcal biofilm formation – will a greater understanding of pathogenesis lead to better management of device-related infection? Clin Microbiol Infect, 2005, 11, 12, 967-973.
11. Fux, C. A., Costerton, J. W., Stewart, P. S., Stoodley, P. Survival strategies of infectious biofilms. Trends in Microbiology, Volume 13, Issue 1, January 2005, Pages 34-40.
12. Gattringer, R., Nikš, M., Ostertág, R., Schwarz, K.,et al. Evaluation of MIDITECH automated colorimetric MIC reading for antimicrobial susceptibility testing. Antimicrob Chemother, 2002, 49, 4, 651-659.
13. Hall-Stoodley, L., Costerton, J. W., Stoodley, P. Bacterial biofilms: from the natural environment to infectious diseases, Nature Rewiews Microbiology, 2004, 2, 2, 95-108.
14. Holá, V., Růžička, F. Biofilmové infekcie močových katétrů. Epidemiologie, mikrobiologie, imunologie, 2008, 2, 47-52.
15. Holá, V., Růžička, F., Tejkalová, R., Votava, M. Stanovení citlivosti k antibiotikům u biofilmpozitívních forem mikroorganizmů. Klin mikrobiol inf lék, 2004, 10, 5, 218-222.
16. Knobloch, J. K. M., von Osten, H., Horstkotte, M. A., et al. Minimal attachment killing (MAK): a versatile method for susceptibility testing of attached biofilm- positive and – negative Staphylococcus epidermidis. Med Microbiol Immunol, 2002, 191, 107-114.
17. LaPlante, K. L., Mermel, L. A. In vitro activities of Televancin and Vancomycin against biofilm-producing Staphylococcus aureus, S. epidermidis, and Enterococcus faecalis strains. Antimicrob Agens Chemother, 2009, 53, 7, 3166-3169.
18. Murray, P. R., Baron, E. J., Landry, M. L., Jorgensen, J. H., Pfaller, M. A. Manual of Clinical Microbiology. 9th ed. American Society for Microbiology, Washington, DC: 2007. 1267. ISBN 1-55581-371-2
19. Nishimura, S., Tsurumoto, T., Yonekura, A., Adachi, K., Shindo, H. Antimicrobial susceptibility of Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis biofilms isolated from infected total hip arthroplasty cases. J Orthop Sci, 2006, 11, 46-50.
20. Olson, M. E., Ceri, H., Morck, D. W., Buret, A. G., Read, R. R. Biofilm bacteria: formation and comparative susceptibility to antibiotics. Can J Vet Res, 2002, 66, 2, 86-92.
21. Pettit, K. R., Weber, Ch. A., Kean, M. J., Hoffmann, H., et al, Microplate alamar blue assay for Staphylococcus epidermidis biofilm susceptibility testing. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2005, 49, 7, 2612-2617.
22. Pettit, K. R., Weber, Ch. A., Pettit, R. G. Application of a high throughput alamar blue biofilm susceptibility assay to Staphylococcus aureus biofilms. Ann Clin Microbiol Antimicrob, 2009, 8, 28,
23. Rachid, S., Ohlsen, K., Witte, W., Hacker, J., Ziebuhr, W. Effect of subinhibitory antibiotic concentrations on polysaccharide intercellular adhesion expression in biofilm – forming Staphylococcus epidermidis. Antimicrob Agens Chemother, 2000, 44, 12, 3357-3363.
24. Rohde, H., Burandt, E. C., Siemssen, N., Frommelt, L., et al. Polysacharide intercellular adhesion or protein factors in biofilm accumulation of Staphylococcus epidermidis and Staphylococcus aureus isolated from prosthetic hip and knee joint infections. Biomaterials, 2008, 28, 1711-1720.
25. Shanks, R. M. Q., Donegan, N. P., Graber, M. L, Buckingham, S. E., Heparin stimulates Staphylococcus aureus biofilm formation. Infect Imun, 2005, 73, 8, 4596-4606.
26. Shanks, R. M. Q., Sargent, J. L., Martinez, R. M., Graber, M. L., et al. Catheter lock solutions influence staphylococcal biofilm formation on abiotic surfaces. Nephrol Dial Transplant, 2006, 21, 8, 2247-2255.
27. Smeltzer, M., Nelson, C., Evans, R. Biofilms and aseptic losening. In Shirtliff, M., Leid J. (eds.) The role of Biofilms in device – related infections, Springer, Berlin, Heidelberg, 2009, 57 – 74. ISBN 978-3-540-68119-9.
28. Stepanović, S., Vuković, D., Hola, V, Di Bonaventura, G., et al. Quantification of biofilm in microtiter plates: overview of testing conditions and practical recommendations for assessment of biofilm production by staphylococci. APMIS 2007, 115, 891-899.
29. Stewart, P. S. Mechanism of antibiotic resistance in bacterial biofilms. Int J Med Microbiol. 2002, 292, 2,107-113.
30. Stewart, P. S., Mukherjee, P. K., Ghannoum, M. A. Biofilm antimicrobial resistance. In Ghannoum, M., OęToole, G. A. (eds.) Microbial biofilms, ASM Press, Washington, DC, 2004, 250-268. ISBN 1-55581-294-5.
31. Toledo-Arana, A., Merino, N., Vergara-Irigaray, M., et al. I. Staphylococcus aureus develops an alternative, ica-independent biofilm in the absence of the arlRS two-component system. Bacteriol, 2005, 187, 15, 5318-5329.
32. Widmer, A. F., Frei, R., Rajacic, Z., Zimmerli, W. Correlation between in vivo and in vitro efficacy of antimicrobial agents against foreign body infections. J Infect Dis, 1990, 162, 96–102.
Labels
Hygiene and epidemiology Medical virology Clinical microbiologyArticle was published in
Epidemiology, Microbiology, Immunology
2010 Issue 2
Most read in this issue
- Staphylococcus saprophyticus – jeho rezistence k vybraným antibiotikům a tvorba biofilmu u kmenů izolovaných z moče
- Oportúnne patogénna kvasinka Candida glabrata a jej mechanizmy rezistencie voči antimykotikám (súborný referát)
- Mobilní genetické elementy v epidemiologii rezistence bakterií k antibiotikům
- Citlivosť kmeňov Staphylococcus aureus rastúcich v biofilme na vankomycín, gentamicín a rifampicín